Arbeitskreis Klein


Vordere Reihe, von links: Tri Yuliani, Anna Thinnes, Magdalena König, Christian Viel; hintere Reihe, von links: Helene Lau, Prof. Jochen Klein, Sebastian Lobentanzer, Constantin Kondak (fehlt: Alina Lehto)

zu den Mitarbeitern


Forschungsinteressen

Forschungsinteressen

  • Untersuchungen der Acetylcholin-Freisetzung und anderer cholinerger Parameter in Tiermodellen der Alzheimerschen Demenz.
  • Zentrale cholinerge Systeme in anderen Tiermodellen, z.B. für Epilespie oder Depression.
  • Nicht-neuronale cholinerge Systeme, z.B. in Epithelien und Leukocyten.
  • Experimentelle Schlaganfallforschung, insbesondere Energiestoffwechsel unter ischämischen Bedingungen, und Einflüsse von Diäten, Wirkstoffen und Anästhetika.
  • Phospholipase D-Signalweg: Hypothese zur Erklärung der fötalen Alkoholembryopathie durch die Ethanol-spezifische Hemmung des Phospholipase D-gekoppelten Signalwegs.

Besondere Expertise

Besondere Expertise

  • Neuropharmakologie. Pathophysiologie und Pharmakologie der neurodegenerativen Erkrankungen wie z.B. Alzheimer´sche Demenz, Schlaganfall, Schädel-Hirn-Trauma, fötale Alkoholembryopathie.
  • Neurochemie, insbesondere der zentralen cholinergen Systeme. Präsynaptische Kontrolle der Synthese und Freisetzung von Acetylcholin. Neurotoxikologie der Acetylcholinesterase- inhibitoren.
  • Cholin: alle Aspekte, insbesondere Kontrolle der Acetylcholinsynthese durch Präkursoren und Freisetzungswege von Cholin aus cholinhaltigen Phospholipiden.
  • Signaltransduktion durch Phospholipasen: Rollen der Lipidbotenstoffe bei Proliferation und Apoptose. Regulation und Funktion der Phospholipase D im Gehirn.
  • Suchtstoffe, insbesondere Ethanol und MDMA.
  • Zentral wirksame Pflanzenextrakte und ihre Inhaltsstoffe, insbesondere Ginkgo biloba und Johanniskraut.

Auswahl publizierter Arbeiten

Auswahl publizierter Arbeiten

  • M. König, A. Thinnes and J. Klein (2017) Microdialysis and its use in behavioural studies: Focus on acetylcholine. J. Neurosci. Meth., doi: 10.1016/jneumeth.2017.08.013.
  • K. Koch, D. Berressem, J. Konietzka, A. Thinnes, Gunter P. Eckert and J. Klein (2017) Hepatic ketogenesis induced by middle cerebral artery occlusion in mice. J. Amer. Heart Assoc., doi: 10.1161/JAHA.117.005556.
  • I. Imran, M.H. Hillert and J. Klein (2015) Metabolic responses to lithium/ pilocarpine-induced status epilepticus in rat brain. J. Neurochem. 135: 1007-1018.
  • F. Mohr, E. Krejci, M. Zimmermann and J. Klein (2015) Dysfunctional presynaptic M2 receptors in the presence of chronically high acetylcholine levels: data from the PRiMA knockout mouse. PLoS One 10(10):e0141136.
  • T.M. Schwarzkopf, K. Koch and J. Klein (2015) Reduced severity of ischemic stroke and improvement of mitochondrial function after dietary treatment with the anaplerotic substance triheptanoin. Neuroscience 300: 201-209.
  • U. Burkhardt, S. Beyer and J. Klein (2015) Small-molecular PLD inhibitors showed additional inhibitory effects in PLD-deficient mouse astrocytes. Eur. J. Pharmacol. 761: 398-404.
  • U. Burkhardt, B. Wojcik, M. Zimmermann and J. Klein (2014) Phospholipase D is a target for inhibition of astroglial proliferation by ethanol. Neuropharmacology 79: 1-9.
  • M. Hillert, I. Imran, M. Zimmermann, H. Lau, S. Weinfurter and J. Klein (2014) Dynamics of hippocampal acetylcholine release during lithium-pilocarpine-induced status epilepticus in rats. J. Neurochem. 131: 42-52.
  • J. Lietsche, J. Gorka, S. Hardt, M. Karas and J. Klein (2014) Self-built microdialysis probes with improved recoveries of ATP and neuropeptides. J. Neurosci. Meth. 237: 1-8.

Methoden

Methoden

  • In vivo-microdialysis to evaluate central cholinergic systems (rats and mice).
  • Middle cerebral artery occlusion in mice (stroke model).
  • Basic animal experimentation: anesthesia, injections, blood and CSF withdrawal, arterio-venous differences.
  • Measurements of cholinergic parameters: HACU/LACU, AChE, ChAT etc.
  • Basic behavioural analysis of rats and mice (neurological and cognitive testing).
  • Brain slices as in vitro-models of ischemia; synaptosomes and synaptoneurosomes, e.g. for ion flux assays.
  • Primary cell cultures of neurons and astrocytes, e.g. for fluorescence microscopy (fura-2) and neurotoxicity assays.
  • High-performance liquid chromatography for the determination of acetylcholine and choline in the fmol range.
  • Analysis of phospholipids and choline metabolites.
  • Measurements of phospholipase activation, e.g. phospholipase D by transphosphatidylation assay.
  • Basic techniques in protein chemistry, cell and molecular biology (e.g. protein purification, electrophoresis, PCR, cell permeabilization with bacterial toxins).